1.石蜡及冰冻切片的制备
标本收集
对于石蜡包埋的组织,活检或手术切除标本尽快取材或固定,避免组织自溶及抗原变性等影响免疫组化结果。对于冰冻切片的组织,取材后应立即放如液氮冷冻,然后放入-80℃保存。取材时应保持所检标本原有的结构、形态,为避免挤压组织,尽量使用锋利刀片,并且避开坏死组织。
石蜡切片
连续切片按序贴在玻片的下1/3处。52-
冰冻切片
将组织取材后,置于冰冻切片机切片架上放置一段时间,待组织块冷冻变硬后切片,厚度为2~10μm。将切片贴附在载玻片上,空气中稍风干(1~2min),后放入固定液中固定。
2.操作流程:
SABC法
⑴固定(对于石蜡包埋的组织,一般用4%的多聚甲醛固定液。对于冰冻组织,一般采用冰冻丙酮,但对于不同的组织和抗原,可选用不同的固定液,应根据具体情况而定);
⑵脱水浸蜡(75%乙醇90~120min,85%乙醇30~60min,95%乙醇Ⅰ1h,95%乙醇Ⅱ 2h,,无水乙醇Ⅰ45~60min,无水乙醇Ⅱ45~60min,二甲苯Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ各15min(可视观察结果而定),石蜡Ⅰ60min,石蜡Ⅱ60min);
⑶包埋(铁板架包埋或其他容器)
⑷脱蜡(二甲苯Ⅰ10min,二甲苯Ⅱ10min,二甲苯 Ⅲ 10min,无水乙醇5min,95%乙醇5min,85%乙醇3min,75%乙醇3min,流水冲洗。)
⑸PBS洗2~3次各5分钟;
⑹3%H2O2(80%甲醇)滴加在玻片组织上,室温静置10分钟;
⑺PBS洗5分钟×2~3次;
⑻抗原修复(一般情况下可采用微波修复或高压修复,对于石蜡切片的免疫组化实验时,最好采用高温加热抗原修复,这将有助于暴露抗原决定簇,从而增加免疫组化染色的强度,不同抗体的最佳修复液请参阅抗体说明书);
⑼PBS洗5分钟×2~3次;
⑽滴加正常山羊血清封闭液,室温20~30分钟,甩去多余液体,不洗。
⑾滴加Ⅰ抗,室温静置2小时(或4℃过夜或
⑿PBS洗5分钟×3次;
⒀滴加Ⅱ抗(II抗中可加入0.05%的tween-20),
⒁PBS洗5分钟×2~3次;
⒂DAB显色5~10分钟(具体时间可通过显微镜观察确定);
⒃PBS或自来水冲洗10分钟,终止显色;
⒄苏木精复染30s~120s分钟,盐酸酒精分化(时间极短);
⒅自来水冲洗10~15分钟;
⒆脱水透明(70%乙醇3min,80%乙醇3min,90%乙醇3min,95%乙醇3min,100%乙醇3min,二甲苯Ⅰ10min,二甲苯Ⅱ10min)。
⒇中性树胶封片,显微镜下观察结果。